Effect of Different Concentrations of Kitoplas Growth Stimulator on Morphological Characteristics and Essential Oil in Peppermint Plant underlow Irrigation stress

Document Type : Research Paper

Authors

Abstract

Abstract
Background and Objective: In order to evaluate the effect of Kitoplas growth stimulus under conditions of low irrigation stress on yield, morphological characteristics, and essential oil content of peppermint herb, a factorial experiment was conducted in a randomized complete block design with three replications.
 
Materials and Methods: Treatments included three levels of irrigation (intervals of 7, 14, and 21 days) and Kitoplas (0, 5, and 10 milliliters per liter).During the experiment, the spray was performed in three steps with a time interval of 15 days. One week after the last spraying, traits such as chlorophyll index, main stem diameter, stomatal resistance, the biological and economic yield of the plant, essential oil content, and percent were evaluated for each sample.
 
Results: The results of the experiment showed that the interaction of water stress and growth stimulation treatment of Kitoplas on the physiological and morphological traits studied in the present study had a significant effect. The results of traits mean comparison showed that the highest amount and percentage of essential oil was observed in plants treated with 10 ml.L-1 of Kitoplas, which was 1.01 mg per 30 g of samples and 3.38%, respectively. On the other hand, with increasing water stress, flower spike length, plant dry weight, total chlorophyll, and stomatal conduction decreased significantly. Treatment with a 10 ml.l-1 Kitoplas growth stimulus under the terms of irrigation every 14 days, increased total chlorophyll index, fresh and dry weight, the number of nodes, and internodes.
 
Conclusion: in the study of menthol and menthol esters in treated and irrigated plants, the highest amount of menthol (25.31%) was observed in plants under the interaction of Kitoplas growth stimulus ether (5 ml) Under irrigation conditions, it was observed after every 7 days.
 

Keywords

Full Text

مقدمه

نعناع فلفلی (Mentha piperita L.) یکی از مهم­ترین گیاهان دارویی متعلق به خانواده Lamiaceae است (فوستر 1996)، که بومی مناطق معتدله به­ویژه اروپا، امریکای شمالی و شمال آفریقا می­باشد و امروزه در سراسر دنیا کشت می­شود (سینگ و همکاران 2011). تولید جهانی این گیاه در سال حدود 7500 میلیون تن است (ورما و همکاران 2011). منتول و منتون اصلی­ترین جزء اسانس بوده و خواص ضدمیکروبی دارند (دایی وهمکاران 2010). مقدار منتول معیار اصلی در تعیین کیفیت اسناس نعناع فلفلی است (کومار و همکاران 2004)؛ با توجه به اینکه که گیاهان دارویی از جمله نعناع فلفلی محصولی کیفی محسوب می­شود، می­توان با به­کارگیری فاکتورهای زراعی مناسب در راستای افزایش عملکرد کمی و کیفی آن گام برداشت. البته درچند دهه اخیر مصرف نهاده­های شیمیایی در زمین­های زراعی موجب معضلات زیست محیطی عدیده­ای از جمله آلودگی منابع آب، افت کیفیت محصولات کشاورزی و کاهش میزان حاصل­خیزی خاک­ها گردیده است (شارما 2002).

رشد گیاهی توسط چند عامل مهم کنترل می­شود که دراین میان آب نقش حیاتی دارد .تنش خشکی یکی از شایع­ترین و مخرب ترین تنش­های غیرزیستی می­باشد که رشد گیاهان را در سراسر جهان و به ویژه در مناطق خشک و نیمه خشک محدود و منجر به کاهش زیادی در عملکرد گیاهان می­گردد (گارسیا و همکاران 2014، وانگ وهمکاران 2011). در گیاهان عالی، فشار توژسانس طی تنش خشکی با کاهش رشد و نمو سلول­ها باعث کاهش رشد برگ، سطح برگ و سطح تعرق گیاه شده و در نتیجه سطح فتوسنتزی گیاه را کاهش داده و منجر به کاهش تولید ماده خشک و عملکرد می­شود (گارسیا و همکاران 2014). نتایج تحقیقات حاکی ازآن است که گیاهان هنگام مواجه شدن با تنش­های محیطی اغلب از رشد کمتری برخوردارهستند، چراکه دراین شرایط مواد پرورده موجود را برای افزایش سنتز متابولیت­های ثانویه )ترکیبات ترپنی) اختصاص می­دهند تا بقای خود را درشرایط سخت محیطی تضمین نمایند (رضائی چیانه و همکاران 2012; ربیعی 2012). بسته به مرحله فیزیولوژیکی که گیاه درآن به سر می­برد و شدت تنش، کم آبی اثرات مختلفی برگیاه می­گذارد، واکنش گیاهان به کمبود آب و تنش خشکی بخش وسیعی از فعالیت­های تحقیقاتی را به خود اختصاص داده است و تمامی این مطالعات، خشکی را مهم­ترین عامل محدودکنندة محیطی برای محصولات کشاورزی دانسته­اند (رضاپور و همکاران 2011).

تأثیرتنش­های خشکی برمحصولات زراعی در ایران به طور مفصل مورد بررسی قرار گرفته است ولی، متأسفانه در مورد گیاهان دارویی که حتی ممکن است، تأثیر مثبتی نیز بر خواص دارویی آن­ها داشته باشند، بررسی­های جامع ومفصل کمترصورت گرفته است .همچنین باتوجه به اینکه هرچه مقدار مواد مؤثره یک گیاه دارویی بیشتر باشد، حاصل آن در صنایع داروسازی مقرون به صرفه می باشد، شناخت عوامل مؤثر برکمیت وکیفیت مواد مؤثره گیاهان دارویی مورد توجه محققین قرارگرفته است (امیدبیگی و محمودی 2010). واکنش گیاهان به تنش خشکی به ماهیت کمبود آب وابسته است و پاسخ گیاهان به تنش خشکی می­تواند به صورت پاسخ کوتاه مدت، پاسخ میان مدت و پاسخ بلند مدت طبقه بندی شود. پاسخ کوتاه مدت به تنش کم آبی با کاهش حداکثر جذب CO2 همراه است. از جمله واکنش­های میان مدت به تنش خشکی، تنظیم اسمزی به­وسیله تجمع نمک­ها و پاسخ بلند مدت به خشکی شامل الگو­های ژنتیکی زیست توده می­باشد (سالک جلالی وهمکاران 2012).

      نتایج پژوهشی نشان داد تنش کم آبی، علاوه بر کاهش زمان گلدهی و رسیدن فیزیولوژیک هم چنین باعث کاهش تعداد برگ، ارتفاع گیاه و قطر ساقه شده است و عملکرد را نیز تا 60 درصد کاهش می دهد (دانفورد و واسکز 2005). دربررسی اثرتیمارهای مختلف ابیاری بر تجمع اسانس، ترکیبات آن و برخی صفات اکوفیزیولوژیکی در رازیانه درصد اسانس با رسیدگی دانه­ها کاهش، اما تنش خشکی باعث افزایش تولید اسانس دانه شد. همچنین با کاهش مقدار آب آبیاری، تعداد چتر در گیاه، تعداد دانه، عملکرد بیولوژیکی و عملکرد اسانس در گیاه رازیانه به­طور معنی­داری کاهش یافت (رضائی چیانه و همکاران 2012). نتایج پژوهشی نشان داد که فواصل آبیاری اثر معنی­داری بر ارتفاع گیاه، طول خوشه­گل تعداد سنبله در بوته، عملکرد دانه و درصد موسیلاژ در گیاه اسفرزه داشت (قاسمی سیانی 2011). با بررسی اثر فواصل آبیاری و تراکم بوته بر عملکرد و اجزای عملکرد سیاهدانه مشاهده شد که تیمارهای مختلف آبیاری تاثیر معنی­داری بر کلیه صفات مورد مطالعه به جز وزن هزاردانه و شاخص برداشت داشت (نوروزپور و رضوانی مقدم 2006).

       کودهای زیستی شامل سلول­های زنده از انواع مختلف میکروارگانیسم­ها هستند که قابلیت جذب عناصر غذایی را با استفاده از فرآیندهای زیستی برای گیاهان را فراهم کرده است. آزاز و همکاران (2009) امکان استفاده از کودهای زیستی به جای کود­های شیمیایی را در گیاه رازیانه بررسی کرده و نتیجه گرفتند که رشد رویشی، عملکرد و اسانس گیاه رازیانه در تیمارهای کود زیستی افزایش یافت (آزازوهمکاران 2010). همچنین کاربرد کودهای زیستی مانند نیترواکسین، و سوپر نیتروپلاس نقش مفید و موثری در بهبود ویژگی­های رشد، عملکرد اندام هوایی و خصوصیات کیفی و اسانس گیاه دارویی زوفا (Hyssopus officinalis L.) و سه گونه نعناع دارد (عبدالهادی و همکاران 2009; کوچکی و همکاران 2008). کیتوپلاس حاوی ترکیبات کیتبنی می­باشد که کیتین و کیتوزان ترکیب اصلی دیواره­های سلولی برخی جانوران از جمله خانواده خرچنگ مانند میگو، خرچنگ خاردار، حشرات، برخی پاتوژن­های گیاهی ومیکروارگانیسم­ها را تشکیل می­دهد وکاربردهای متعدد صنعتی، دارویی و کشاورزی برای آن گزارش شده است (بابل و کورنیاوان 2003). استفاده از کیتوزان به عنوان محرک زیستی کارامد در افزایش تولید متابولیت­های ثانویه گیاهان زیادی گزارش شده است (چینگ و همکاران 2006)  همچنین گزارش شده است که کیتوزان می­تواند با کاهش تعرق و حفظ محتوای نسبی آب باعث ایجاد تحمل به کم آبی گردد (مهدوی و همکاران 2014). درمطالعهای دیگر اثر محرک­بودن پلیمرهای کیتوزان بر گیاه بادنجان بررسی شد که نتایج این تحقیق نشان داد محرک کیتوزان قادر است فعالیت آنزیم­های گیاهیchitosanase و peroxidase را افزایش دهد) مندال، 2010).

       در راستای کشاورزی پایدار، کودهای زیستی به عنوان جایگزین تدریجی کودهای شیمیایی و یا کاهش مصرف این ترکیبات شیمیایی مطرح می­باشد. همچنین باتوجه به کمبود آب درکشور و اثرات تنشی برروی عملکرد و صفات مورفولوژیک گیاهان نعناع فلفلی در طول دوره رشد این گیاه دارد .لازم است که بررسی اثرات ناشی از تنش خشکی بر روی تغییرات عملکرد واجزاء عملکرد وبرخی پارامترهای رشدی  این گیاه پرداخته شود تا پاسخ­های گیاه درمقابله با تنش خشکی ارزیابی شود.  بر این اساس، این پژوهش با هدف  بررسی تاثیر  تغذیه گیاه با کیتوپلاس بر رشد و تغییرات مورفولوژیکی و ترکیبات اسانس این گیاه طی شرایط تنش خشکی انجام شد.

 

مواد وروش ها

    آزمایش در مزرعه ای در شهر پارس آباد مغان در شمال غرب ایران، به صورت آزمایش فاکتوریل در قالب طرح پایه بلوک­های کامل تصادفی با ۳ تکرار انجام شد، فاکتورهای آزمایش شامل۳ سطح تنش کم آبیاری (آبیاری در فواصل آبیاری 7، 14 و 21 روز) و محرک رشدی کیتوپلاس در  ۳ سطح (0، 5 و 10 میلی­لیتر در لیتر)  بعد از گذشت 45 روز از زمان کاشت گیاهان نعناع فلفلی، به صورت محلول پاشی (با محلول پاش دستی 2 لیتری) و در فاصله زمانی 15 روز یک­بار در سه مرحله اعمال شد، ابعاد کرت­ها 1*1 و فاصله بوته­ها روی ردیف و بین ردیف برابر با 25 سانتی­متر بود. یک هفته بعد از آخرین محلول پاشی صفاتی مانند شاخص کلروفیل ( با استفاده از SPAD-500)، قطر ساقه اصلی، تعداد گره و میانگره، وزن 10 برگ بالایی در ساقه اصلی، وزن خوشه گل،  طول میانگره، قطر و ارتفاع خوشه گل و مقاومت روزنه­ای در روی بوته و بعد از برداشت کامل محصول نیز صفاتی مانند وزن تر و خشک کل پیکره گیاه به جز ریشه، عملکرد اقتصادی و عملکرد بیولوژیک گیاه، ترکیبات اسانس و درصد اسانس برای هر نمونه مورد ارزیابی قرار گرفت.

جهت انجام آزمایش تجزیه خاک، تا عمق 30 سانتی‌متری به­طور زیگزاگ از سه نقطه و در سه عمق زمین مورد آزمایش نمونه‌برداری انجام پذیرفت. سپس نمونه‌های سه عمق با هم مخلوط گردیدند و به آزمایشگاه موسسه تحقیقات آب و خاک فرستاده شد. نتایج آزمون خاک در جدول زیر ارائه شده است.

 

 

جدول1- نتایج آزمایش خاک مزرعه آزمایشی در عمق 0-30 سانتی متر

عمق (cm)

درصد رس

درصد سیلت

درصد شن

اسیدیته

شوری (ds.m-1)

ظرفیت زراعی (% حجمی)

نقطه پژمردگی

0-30

34

40

26

59/7

15/2

7/26

96/15

 

 

برای ازریابی مقاومت روزنه­ای، از دستگاه پرومتر استفاده شد. در این روش بطور تصادفی ٥ برگ از هر گیاه نعناع فلفلی (در هرکرت 4 بوته وجود داشت که در مجموع 20 برگ از هرکرت) در هر کرت انتخاب و پس از قرار گرفتن هر برگ در مابین سنسورهای حساس پرومتر، مقاومت روزنه­ای بر حسب ثانیه برسانتی­متر (S.cm-1) اندازه­گیری گردید. دستگاه مذکور بر حسب سانتی­متر بر ثانیه (cm.S-1) کالیبره شده و هدایت روزنه­ای (عکس مقاومت روزنه­ای ) اندازه­گیری شد.

برای اندازه­گیری ­میزان اسانس، نمونه­های تازه نعناع فلفلی را در شرایط  نیم­سایه به مدت108ساعت خشک نموده ودر زمان اسانس­گیری، مقدار30 گرم از هر نمونه خشک جدا و بلافاصله عمل استخراج اسانس به روش تقطیر با آب و با استفاده ازدستگاه کلونجر به مدت 3 ساعت ودرشرایط کاملاً یکسان انجام گردید.

شناسایی اجزای اسانس در آزمایشگاه مرکزی دانشگاه محقق اردبیلی و با استفاده از دستگاه گاز کروماتوگرافی متصل شده به طیف سنج جرمی (GC/MS) انجام شد. دستگاه گاز کروماتوگرافی مورد استفاده مدل 7890A ساخت شرکت Agilent  آمریکا و ستون مویینه مورد استفده HP-5MS به طول 30 متر و به قطر 25/0 میلی­متر، ضخامت فاز ساکن 25/0 میکرومتر بود. دمای اولیه 60 درجه سلسیوس با زمان نگه­داری 4 دقیقه، سپس 3 درجه سلسیوس با 1 دقیقه تا 100 درجه سلسیوس برای 2 دقیقه، سپس 6 درجه سانتی­گراد بر 1 دقیقه تا 270 درجه سانتی­گراد برای 5 دقیقه گاز حامل هلیوم 9/99 درصد با میزان جریان 1 میلی­لیتر در دقیقه است (آدامز 2001).

تجزیه وتحلیل آماری داده­ها (انجام تجزیه واریانس­ها و مقایسه میانگین­ها) با استفاده از نرم‌افزارهای آماریSAS V.9.1 و رسم نمودارها باکمک نرم افزار Microsoft office Excel انجام شد.

 

نتایج و بحث

بررسی صفات موفولوژیک در گیاه نعناع فلفلی تحت تنش آبی

نتایج حاصل از تجزیه واریانس و مقایسه میانگین صفات نشان داد که اثر تنش رطوبتی بر میزان عرض ساقه­، قطر و ارتفاع خوشه گل و در گیاه نعناع فلفلی معنی­دار (p ≤ 0.01) بود (جدول 2).  به­طورکلی با کاهش میزان آبیاری میزان عرض ساقه، قطر و طول خوشه گل

جدول2- تجزیه واریانس و مقایسه میانگین اثرات تیمار محرک رشدی کیتوپلاس تحت تنش آبیاری بر روی چند صفت مورفولوژیک گیاه دارویی نعناع فلفلی

 

وزن خشک بوته(g)

وزن تر بوته(g)

وزن خوشه گل (g)

تعداد گره

تعداد میان­گره

طول خوشه گل (mm)

قطر خوشه گل (mm)

قطر ساقه (mm)

Kito

Ir

a33/242

a7/907

a96/2

a11/12

a11/11

a72/62

a 42/13

a833/4

-

7

b56/177

ab9/708

ab76/2

b277/11

b27/10

b6/47

b 44/10

ab511/4

-

14

bc.56/161

b601

ab 74/2

c98/9

c008/9

b25/45

b 08/10

b054/4

-

21

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

b78/161

c4/577

-

b63/10

b63/9

-

-

-

0

-

a 67/218

b9/757

-

ab008/11

ab 036/10

-

-

-

5

-

ab01/201

a2/882

-

a72/11

a72/10

-

-

-

10

-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ANOVA

ns

ns

ns

ns

ns

ns

ns

ns

 

Block

*

*

*

**

**

**

*

*

 

Ir

ns

*

ns

**

*

ns

ns

ns

 

Kito

ns

ns

ns

ns

ns

ns

ns

ns

 

Ir*Kito

درهرستون میانگین‌های با حداقل یک حرف مشترک فاقد اختلاف معنی‌دار درسطح احتمال5 درصد آزمون دانکن می‌باشند. Ir): آبیاری فاصله آبیاری، 7، 14 و 21روز. Kito: کیتوپلاس در سطح 0، 5 و 10 میلی­لیتر در لیتر)

 

نیز کاهش یافت. بیشترین میزان عرض ساقه و قطر و طول خوشه گل (به ترتیب  mm833/4، mm 42/13 و mm72/62) در گیاهان آبیاری شده درفواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد (جدول 2) نتایج آزمایش فوق با نتایج بهرامی­نژاد و همکاران (2013) مطابقت دارد. نتایج حاصل از جدول مقایسه میانگین و تجزیه واریانس نشان داد که اثرات اصلی تنش رطوبتی و محرک رشد ارگانیک کیتوپلاس بر تعداد گره­ها (p ≤ 0.01) و طول میانگره­ها (p ≤ 0.05) معنی­دار بود (جدول 2). همچنین با افزایش میزان آبیاری تعداد گره و میان گره در گیاهان نعناع فلفلی نیز افزایش یافت؛ به­طوری که بیشترین تعداد گره و میانگره  ( به ترتیب 11/12 و 11/11 ) تحت شرایط آبیاری شده درفواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد. همچنین مطابق با نتایج حاصل از جدول مقایسه میانگین (جدول 2) بیشترین میزان تعداد گره و میانگره در گیاهان تحت تیمارml.l-1 10 تیمار محلول پاشی کود زیستی کیتوپلاس مشاهده شد.

اثرات اصلی تنش رطوبتی (p ≤ 0.01) و کیتوپلاس (p ≤ 0.05) و همچنین اثرات متقابل تنش آبیاری و تیمار کیتوپلاس (p ≤ 0.05) بر میزان طول میانگره معنی­دار بود (جدول 3).  به­طور کلی با افزایش میزان تنش آبیاری  طول میانگره­ها درگیاه نعناع فلفلی تیمار شده و فاقد تیمار با کاهش همراه بود ولی این کاهش در گیاهان فاقد تیمار تحت تنش­های کم آبیاری بیشتر از گیاهان دارای تیمار بود، همچنین تیمار با محرک رشد طبیعی کیتوپلاس باعث افزایش رشد در گیاه نعناع فلفلی شد. به­طوری­که بیشترین میزان طول میانگره در گیاهان  تحت  تیمار  ml.l-15 محلول کیتوپلاس تحت شرایط آبیاری در فواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد و کمترین میزان طول میانگره در گیاهان شاهد تحت آبیاری در فواصل آبیاری 21 روزمشاهده شد بود (جدول 3). بطورکلی در گیاهان نعناع فلفلی با افزایش تنش آبیاری میزان وزن خوشه گل نیز باکاهش همراه بود (جدول 2). از این رو بیشترین میزان وزن خوشه گل در گیاهان تحت آبیاری در فواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد و کمترین میزان وزن خوشه گل در گیاهان تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 21 روز مشاهده شده که با وزن خوشه گل در گیاهان تحت آبیاری شده در درفواصل آبیاری 14 روزمشاهده شد، تفاوت معنی­داری نداشت (جدول 2).

نتایج حاصل از تجزیه واریانس و مقایسه میانگین وزن 10 برگ بالایی ساقه (جدول 3) نشان داد که با افزایش تنش آبیاری همراه با سطوح مختلف تیمار حاوی کیتوپلاس میزان وزن 10 برگ بالایی ساقه نیز افزایش یافت. به طوری که بیشترین وزن 10 برگ در گیاهان تیمار شده با کیتوپلاس ml.l-1 5 تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 21 روزه خاک به­دست آمد.

آب و عناصر غذایی ارتفاع خوشه گل، طول ساقه مانند هر اندام رویشی یا زایشی را تحت تاثیر قرار می­دهد (ارکان و همکاران 2012). افزایش سطح تنش آبیاری می­تواند به افزایش اختصاص مواد فتوسنتزی به ریشه نسبت به بخش­های هوایی گیاه باشد که کاهش عملکرد را در گیاه به دنبال دارد (شائو و همکاران 2008). از اولین نشانه­های کمبود آب، کاهش فشار تورژسانس سلولی و در نتیجه کاهش رشد و توسعه سلول­ها به ویژه در ساقه و برگ­هاست. به عبارت دیگر کاهش مواد فتوسنتزی تولیدی به علت کاهش سطح برگ و کاهش انتقال موادآسیمیلاتی به سمت اندام­های زایشی دراثر تنش کمبود آب سبب کاهش عملکرد سرشاخه­های گلدار می­گردد. به همین دلیل اولین اثرمحسوس کم­آبی برگیاهان را می­توان از روی اندازه کوچک­تر برگ­ها وارتفاع کمتر گیاهان تشخیص داد .به علاوه در شرایط کم­آبی ،جذب مواد و عناصرغذایی نیز کاهش یافته و بنابراین رشد وتوسعه برگ­ها محدود می­گردد .متعاقب کاهش سطح برگ، جذب نور نیز کاهش یافته و ظرفیت کل فتوسنتزی گیاه کاهش می­یابد و بدیهی است که با محدود شدن فرآورده­های فتوسنتزی در شرایط کمبود آب، رشد گیاه ونهایتا عملکرد آن دچار نقصان می­شود ( امید بیگی و محمودی 2010).

روند کاهش تعداد گره و میانگره با روند کاهش ارتفاع ساقه و عملکرد دراثرتشدید کمبود آب هم­سو می­باشد ( جدول 2 و 3).  همانطور که گفته شد یکی ازاولین نشانه­های کمبودآب، کاهش تورژسانس ودر نتیجه رشد وتوسعه سلول خصوصاً درساقه وبرگ­ها است. با کاهش فشار تورزسانس در اثر کمبودآب، نمو سلول به دلیل عدم وجود فشار درون سلول کاهش می­یابد. بنابراین بین کاهش اندازه سلول ومیزان کاهش آب رابطه معنی­داری در بافت­های گیاهی دیده می­شود. ازطرفی با کاهش رشد سلول اندازه اندام نیز محدود می­شود و به همین دلیل است که اولین اثر محسوس کم آبی برروی گیاهان را می­توان از روی اندازه فاصله کمتر میانگره­ها یا ارتفاع گیاهان تشخیص داد (هونگ بو و همکاران 2008). این تغییرات در رشد می­تواند به عنوان سازگاری مورفولوژیکی گیاه به آب و تنش­های محیطی برای کاهش تعرق و ایجاد مصرف کمتر آب مورد توجه قرار گیرد (بانون و همکاران 2006). کاهش رشد به دلیل کمبود آب توسط محققین دیگر نیز گزارش شده است (ارکان و همکاران 2012؛ بیتائیب و همکاران 2009).

به طور کلی، نتایج حاصل از بررسی پارامتر­های موفولوژیکی، کاهش رشد رویشی شدید گیاهان را تحت تاثیر تنش آبیاری را نشان می­دهد. از سوی دیگر، استفاده از کود زیستی کیتوپلاس به صورت محلول پاشی، به ویژه در غلظت ml.l-1 10در بیشتر موارد باعث افزایش رشد رویشی شده است (جدول 2 و 3). نتایج فوق با نتایج حاصل از پژوهش سایر پژوهشگران درباره استفاده از کود­های زیستی مطابقت دارد (خان و همکاران، 2002؛ گورنیک وهمکاران، 2008).

 

وزن تر، خشک و نسبت وزن خشک به تر

نتایج حاصل از مقایسه میانگین و تجزیه واریانس مربوط به وزن­تر و خشک بوته در جدول 2 آورده شده است. مقایسه میانگین داده­ها نشان داد که با افزایش میزان آبیاری، وزن تر و خشک در گیاه نعناع فلفلی نیز افزایش یافت به­طوری که بیشترین میزان وزن تر و خشک (به ترتیب 7/907و 33/242 گرم در متر­مربع) در گیاهان تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد. همچنین باتوجه به نتایج حاصل با افزایش غلظت کیتوپلاس میزان وزن تر و خشک نیز با افزایش همراه بود که بیشترین میزان وزن­تر بوته (g.m2 2/882 ( در گیاهان تحت تیمار ml.l-1 10 کیتوپلاس و بیشترین میزان وزن خشک بوته  (g.m2 67/218) در گیاهان تحت تیمار ml.l-1 5 کیتوپلاس مشاهده شد (جدول 2).

طبق نتایج حاصل از جدول مقایسه میانگین صفات (جدول 3)، بطور کلی با افزایش میزان تنش آبیاری و افزایش غلظت کیتوپلاس محلول پاشی شده نسبت وزن خشک به تر در گیاهان نعناع فلفلی افزایش یافت. به­طوری که بیشترین نسبت وزن خشک به تر ( 12/33 درصد) در گیاهان تیمار شده با کیتوپلاس ml.l-1 5 تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 21 روز مشاهده شد. گزارش شده است که معیارهای رشد رویشی از قبیل ارتفاع بوته، تعداد میانگره، طول میانگره در گیاه، وزن تر و خشک کل بوته، ساقه و کل گیاه، باافزایش تنش خشکی کاهش یافته است. با توجه به اینکه  تعداد شاخه­ها در بوته به طور معنی­داری تحت کمبود آب کاهش یافت. وزن تر و خشک گیاهان به طور قابل توجهی تحت تاثیر تغییرات در رطوبت خاک قرار گرفت. وزن­های تر و خشک در زیر سطوح مختلف کسری آب کاهش می­یابد. این امر می­تواند منجر به کاهش محتوای کلروفیل و همچنین بازده فتوسنتز شود (کاوات و همکاران، 2012؛ بهرامی­نژاد وهمکاران 2013). همچنین ممکن است این کاهش به علت بسته­شدن روزنه­ها و جلوگیری از فعالیت آنزیم روبیکسو باشد (لولر و کرونیک 2001).

با این حال، شرایط تنش کمبود آب سبب سرکوب مشخصی در کارایی فتوسنتزی گیاه شده است. کیتوپلاس ممکن است برخی ترکیبات آمینو مورد نیاز برای رشد گیاهان را فراهم کند که منجر به افزایش کل نیتروژن در برگ­ها و یا توانایی بالا گیاهان برای جذب نیتروژن از خاک می­شود زیرا کیتوپلاس به دلیل دارا بودن کیتوزان ممکن است آنزیم های کلیدی را افزایش دهد و باعث  فعالیت متابولیسم نیتروژن و افزایش حمل و نقل و انتقال نیتروژن در برگ و ساقه شود (التناهی 2012). علاوه بر این ،کیتوپلاس حاوی کیتوزان ممکن است از طریق تنظیم فشار اسمزی سلولی، جذب و حمل مواد مغذی ضروری را افزایش دهد و در نتیجه با بهبود رشد و توسعه گیاهان،  تعداد برگ­ها، شاخه­ها و سطح برگ در بوته را افزایش دهد  که در بهبود وزن تر و خشک گیاه موثر است (فوراک و رمضان 2012).

 

شاخص کلروفیل

میزان تغییرات شاخص کلروفیل در اثر تیمار سطوح مختلف کیتوپلاس تحت تنش آبیاری در گیاه نعناع فلفلی در جدول 2 آورده شده است. نتایج تجزیه واریانس داده­ها نشان می­دهد که اثرات اصلی تنش آبیاری (p ≤ 0.01) و اثرات متقابل تنش آبیاری و کیتوپلاس (p ≤ 0.05) معنی­دار بود (جدول 3). نتایج مقایسه میانگین در میزان شاخص کلروفیل نشان می­دهد با افزایش سطح تیمار کیتوپلاس و کاهش میزان آبیاری میزان شاخص کلروفیل افزایش یافت (جدول 3). به­طوری­که بیشترین میزان شاخص کلروفیل در گیاهان تیمار شده  با کیتوپلاس در سطح ml.l-1 5 تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 21 روز مشاهده شد که با گیاهان نعناع فلفلی تیمار شده با کیتوپلاس در سطح ml.l-1 10 تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 21 روز تفاوت معنی­داری نداشت. کمترین میزان شاخص کلروفیل نیز در گیاهان شاهد تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 7 روزه مشاهده شد (جدول 3).

محلول پاشی با کیتوپلاس به­طور قابل توجهی شاخص کلروفیل را در برگ­های گیاه نعناع فلفلی افزایش داده است (جدول 3) محتوای کلروفیل به دلیل کمبود آب در سطح برگ به میزان قابل توجهی کاهش می­یابد؛ این کاهش در کلروفیل تحت تنش خشکی عمدتا به این دلیل است که تخریب غشاء و آسیب کلروپلاست­ها به دلیل تولید بیش از حد گونه­های واکنش پذیر اکسیژن (ROS) یا کلروفیل توسط مسیر بیوسنتز کاهش یافته یا اکسیداسیون در طول تنش آبیاری است  (سالک جلالی و همکاران 2012).

همچنین افزودن کیتوپلاس در غلظت بالا سبب افزایش میزان کلروفیل در مقایسه با گیاهان فاقد تیمار شد، که این افزایش ممکن است از طریق تاثیر مواد حاوی کیتوپلاس (مانند کیتوزان) بر رنگدانه­های فتوسنتزی و افزایش محتوای کلروفیل توسط افزایش سطح درونی از سیتوکینین­ها شود، که این هورمون باعث تحریک سنتز کلروفیل شود (فوراک و رمضان 2012).

 


جدول3- تجزیه واریانس و مقایسه میانگین اثرات تیمار محرک رشدی کیتوپلاس تحت تنش آبیاری بر صفات مورفولوژیک گیاه دارویی نعناع فلفلی.

شاخص کلروفیل (%)

طول میانگره

(mm)

نسبت وزن خشک به تر (%)

وزن 10 برگ بالایی  (g)

Kito

Ir

7/7± 16/40

22/4± 82/65

32/2± 299/26

13/0 ± 38/1

0

7

36/11± 06/49

51/1± 23/75

80/0± 87/26

1/0± 086/1

5

 

03/5± 20/48

08/1± 85/61

94/0± 809/26

1/0±44/1

10

 

18/1± 033/51

13/3± 62/48

59/2± 084/24

42/0± 34/1

0

14

48/5± 93/51

15/4± 14/49

99/4± 72/25

2/0 ± 638/1

5

 

14/4± 033/50

8/5± 35/50

92/3± 31/25

04/0 ± 14/1

10

 

96/3± 43/51

55/4± 42/42

52/4±  41/25

14/0± 707/1

0

21

4/4± 5/52

21/2± 72/44

89/3± 12/33

147/0± 74/1

5

 

49/4± 13/52

15/3± 56/42

93/0± 98/26

15/0± 952/0

10

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ANOVA

ns

ns

ns

ns

 

Block

*

**

**

ns

 

Ir

ns

*

ns

**

 

Kito

**

*

*

**

 

Ir*Kito
               

Ir): آبیاری فاصله آبیاری، 7، 14 و 21روز. Kito: کیتوپلاس در سطح 0، 5 و 10 میلی­لیتر در لیتر)

 


عملکرد اقتصادی و بیولوژیکی

اثرات اصلی رژیم­های مختلف آبیاری و تیمار کیتوپلاس بر روی عملکرد اقتصادی (p ≤ 0.05)  و عملکرد بیولوژیک (p ≤ 0.05) معنی­دار شد. نتایج حاصل از جدول مقایسه میانگین داده­ها نشان داد که با کاهش روند آبیاری میزان عملکرد اقتصادی و بیولوژیکی در سطح هکتار نیز باکاهش همراه بود به­طوری­که بیشترین میزان عملکردی اقتصادی و بیولوژیکی در گیاهان تحت تاثیر تنش آبیاری درفواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد (جدول 4). همچنین بطورکلی تیمار با کیتوپلاس نیز بر میزان عملکرد گیاه نعناع فلفلی تاثیرگذار بود، به­طوری­که با افزایش غلظت محلول پاشی کیتوپلاس میزان عملکرد نیز با افزایش همراه بود و بیشتر عملکرد اقتصادی و بیولوژیکی تحت تیمار ml.l-1 5 کیتوپلاس مشاهده شد که این میزان به ترتیب برابر با 8822 و 7/2186 کیلوگرم درهکتار بود (جدول 4).

احتمالاً، برخورد با  تنش درمرحله رشد ونمو، سبب کاهش سطح برگ، جذب کمتر عناصرغذایی، به دنبال آن کاهش عملکردشود.  نکته­ای که باید مورد اشاره قرارگیرد این است که همیشه همراه با بالا رفتن تنش، عملکرد کاهش می­یابد چرا که در تنش­های بالا گیاه بیشترمواد فتوسنتزی خود را صرف تولید ترکیبات تنظیم کننده­های اسمزی از جمله پرولین، گلایسین-بتائین وترکیبات قندی همانند ساکاروز، فروکتوز و فروکتان می­کند که بتواند پتانسیل آب سلولی را کاهش دهد .این ترکیبات برای گیاه هزینه­بر بوده و گیاه این هزینه را از طریق کاهش عملکرد جبران می­کند. استفاده ازکودهای زیستی به­طور قابل توجهی ازعوامل کاهنده محصول درشرایط تنش جلوگیری می­کند و باعث افزایش عملکرد می­شود. به طورکلی، با توجه به نتایج به دست آمده می­توان اظهار داشت که درشرایط اجرای این پژوهش، کاربرد کود زیستی کیتوپلاس، باتوجه به در دسترس قرارگرفتن حجم مواد مغذی بیشترتوسط گیاه، با تأثیر بر جنبه­های مختلف رشد و نمو از زمان اعمال تا عملکرد نهایی، توانست از طریق هم­افزایی برای عوامل تقویت­کننده رشد و اثر آنتاگونیسمی بر عوامل کاهنده، موجب افزایش رشد و عملکرد بهترشود .مطالعات سایردانشمندان افزایش عملکرد تا 2/8 درصد نسبت به تیمارشاهد درگیاه گوجه فرنگی، ذرت و نیز افزایش40درصدی عملکرد دانه در گندم و جو به کمک کودهای بیولوژیک را گزارش کردند (نجف­وند و همکاران، 2008، زهیر وهمکاران، 2004، جانگاو وهمکاران، 1991).

 

عملکرد و درصد اسانس

با افزایش تنش آبیاری میزان اسانس و به دنبال آن درصد اسانس در گیاهان نعناع فلفلی افزایش یافت و برهمین اساس بیشترین اسانس (ml at 30g dry tissue 972/0) و درصد اسانس (24/3 %) در گیاهان تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 7 روز بدست آمد. کاهش اسانس و درصد اسانس در گیاهان تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 21 روز، احتمالا به دلیل مصرف مواد موثره در گیاه نعناع فلفلی طی حذف رادیکال­های آزاد تولید شده در اثر تنش­های ایجاد شده بر اثر تنش آبیاری می­باشد (جدول 4).

نتایج حاصل از جدول مقایسه میانگین تاثیر کیتوپلاس بر میزان اسانس و درصد اسانس در گیاه نعناع فلفلی را نشان می­دهد که با افزایش میزان غلظت کود کیتوپلاس محلول پاشی شده میزان اسانس و درصد اسانس نیز با افزایش همراه بود به­طوری­که بیشترین اسانس و درصد اسانس در گیاهان تحت تیمار  ml.l-1 10 کیتوپلاس مشاهده شد که این میزان به ترتیب برابر باml  01/1 و 38/3 % بود (جدول 4).

تصور براین است که درشرایط وقوع تنش خشکی و کم آبی، میزان تولید مواد مؤثره به دلیل جلوگیری از اکسیداسیون درون سلولی افزایش می­یابد. در واقع که هر کمبودی که رشد را بیشتر از فتوسنتز محدود کند، تولید متابولیت­های ثانویه را افزایش می­دهد (هرمز و ماتسون 1992). همچنین با توجه به اینکه میزان اسانس در اثر مصرف تیمارهای مختلف کود بیولوژیکی کیتوپلاس افزایش می­یابد (جدول 4)، می­توان گفت از آن­جا که اسانس­ها، ترکیبات ترپنوئیدی هستند، بیوسنتز واحد­های سازنده آن­ها نیازمند ATP و NADPH هستند. همچنین تحقیقات نشان داده که CO2 و گلوکز به عنوان پیش ماده مناسب در سنتز اسانس به­ویژه مونوترپن­ها مطرح هستند، فتوسنتز و تولید فرآورده­های فتوسنتزی ارتباط مستقیمی با تولید اسانس دارد (عسگری­پور رفیعی 2011). کود بیولوژیک کیتوپلاس مانند کود­ بیولوژیک نیتروکسین، از طریق کمک به جذب نیتروژن، فسفر و گوگرد و نقشی که این عناصر در تولید کلروفیل و تامین آنزیم­های مورد نیاز گیاه دارند باعث افزایش میزان بافت­های فتوسنتزی شده و در نهایت باعث افزایش میزان اسانس در گیاه نعناع فلفلی شده­اند (مارتین و همکاران 2006).

هدایت روزنه­ای

نتایج حاصل مقایسه میانگین تاثیر تنش آبیاری بر میزان هدایت روزنه­ای در گیاه نعناع فلفلی نشان داد که با کاهش میزان آبیاری هدایت روزنه­ای نیز در گیاهان نعناع فلفلی نیز با کاهش همراه بود و بیشترین و کمترین  میزان هدایت روزنه­ای در گیاهان نعناع فلفلی به ترتیب  تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 7 و 21 روز مشاهده شد (جدول 4).

 

 

جدول4- مقایسه میانگین و تجزیه واریانس اثر تیمار محرک رشدی کیتوپلاس تحت تنش آبیاری بر صفات

 مورفولوژیک گیاه دارویی نعناع فلفلی.

هدایت روزنه ای

(S.cm-1)

درصد اسانس (%)

اسانس

(ml at 30g dry tissue)

عملکرد بیولوژیکی

عملکرد اقتصادی

Kito

 

Ir

 a26/33

 ab14/3

b921/0

 a3/2423

a 9077

-

7

 b14/30

 a24/3

a972/0

 b6/1775

 b7089

-

14

 c88/23

 b69/2

c808/0

 bc6/1615

 bc6010

-

21

 

 

 

 

 

 

 

-

 c65/2

c797/0

 b8/1617

 b5774

0

-

-

b096/3

b929/0

 a7/2186

a8822

5

-

-

 a38/3

 a01/1

ab01/2010

 ab7579

10

-

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ANOVA

ns

ns

ns

ns

ns

 

Block

*

*

*

**

**

 

Ir

ns

*

*

*

*

 

Kito

ns

ns

ns

ns

ns

 

Ir*Kito

درهرستونمیانگین‌هایباحداقلیکحرفمشترکفاقداختلافمعنی‌داردرسطحاحتمال5درصدآزموندانکنمی‌باشند. Ir): آبیاری فاصله آبیاری، 7، 14 و 21روز. Kito: کیتوپلاس در سطح 0، 5 و 10 میلی­لیتر در لیتر)

 

 

 

روند تغییرات هدایت روزنه­ای نشان می­دهد که هرچه میزان تنش آبی یبیشتر شود هدایت روزنه­ای کاهش می­یابد (جدول 4). بسته شدن روزنه­ها ازاولین پاسخ­های گیاه به تنش خشکی می­باشد و به نظرمی­رسد که عمده­ترین دلیل کاهش فتوسنتزدر اثر تنش خشکی باشد. بسته شدن روزنه ممکن است قابلیت دسترسی به دی­اکسیدکربن را برای روزنه محدودکند. عمده تفاوت­های مشاهده شده درهدایت روزنه­ای بین تیمارهای رطوبتی احتمالاً ناشی ازاقدام گیاه به بستن روزنه­های برگ بوده تا از هدر روی آب جلوگیری شود  (رضایی­راد وهمکاران 2013). بنابراین با شروع دوره خشکی تا مدتی گیاه هدایت روزنه­ای خود را درسطح حداکثر نگه  می­دارد ولی با تداوم دوره خشکی اقدام به کاهش اندازه روزنه­های خود و درنهایت بستن آن­ها می­نماید. ازآن­جایی که تداوم باز بودن روزنه­ها به آماس سلول­های محافظ روزنه که خود آن­ها نیز جزئی از بافت برگ می­باشند وابسته است، لذا کاهش در میزان محتوای نسبی آب برگ می­تواند دلیل دیگر تفاوت هدایت روزنه­ای بین رژیم­های مختلف رطوبتی باشد (محمودیان وهمکاران 2011).

 

 

 

 

ترکیبات اسانس

نتایج حاصل از GC/MS نشان داد که با کاهش میزان آبیاری و افزایش غلظت تیمارهای مورد استفاده  اجزای اسانس از نظر درصد مواد تشکیل دهنده اسانس با تغییراتی همراه شد. مقایسه درصد R-.alpha.-Pinene و .beta.-Pinene نشان می دهد که با کاهش میزان آبیاری و افزایش غلظت محرک رشد طبیعی و نانواکسید آهن میزان این دو ماده با افزایش همراه بود که بیشترین میزان این ماده در گیاهان فاقد تیمار تحت تنش آبیاری در شرایط تنش رطوبتی در فواصل آبیاری 21 روز مشاهده شد البته میزان این دو ماده در اثر محلول پاشی در غلظت­های مختلف محرک رشدی در تنش آبی در فواصل آبیاری 21 روز به دلیل تجزیه یا تبدیل به مواد دیگری با کاهش همراه شد (جدول 5). دربررسی میزان منتون در گیاهان تحت تنش میزان این ماده با کاهش میزان آبیاری (تا حد متوسط) و افزایش غلظت تیمار محلول پاشی محرک رشد طبیعی کیتوپلاس با افزایش همراه بود. و بیشترین میزان منتون (08/33 درصد) در گیاهان تیمار شده با  محرک رشد طبیعی کیتوپلاس در سطح 10 میلی­لیتر تحت شرایط تنش آبیاری درفواصل آبیاری 14 روزبه دست امد. لازم به ذکر است که میزان منتون در گیاهان تحت تنش آبیاری درفواصل آبیاری 21 روز با کاهش همراه بود که این کاهش در گیاهان تیمار شده با محرک رشد طبیعی  کیتوپلاس کمتر از گیاهان فاقد تیمار بود و این تیمارها از کاهش میزان منتون در گیاهان تحت تیمار جلوگیری کرده است (جدول 5).

در بررسی میزان منتول و استرهای منتول در گیاهان تیمارشده و قرار گرفته تحت تنش آبیاری بیشترین میزان منتول (31/25 درصد) در گیاهان تحت تاثیر اترمتقابل محرک رشدی کیتوپلاس (درغلظت 5 میلی­لیتر) تحت تنش آبیاری در فواصل آبیاری 7 روز مشاهده شد. میزان این ماده در گیاهان در فواصل آبیاری 14 و 12 روز کاهش معنی­داری داشت که این کاهش در گیاهان تحت تیمار محرک رشد طبیعی کیتوپلاس نسبت به گیاهان فاقد تیمار (گیاهان شاهد) کاهش کمتری داشت (جدول 5).

    میزان منتافوران در گیاهان تیمار شده با  افزایش غلظت تیمار محلول پاشی محرک رشد طبیعی کیتوپلاس طی شرایط آبیاری درفواصل آبیاری 14 تا 21  روز با افزایش همراه بود که در گیاهان تحت تیمار با محرک رشد طبیعی کیتوپلاس بیشتر از گیاهان فاقد تیمار بود و بیشترین میزان منتافوران (27/23 درصد) در گیاهان تیمار شده با محلول پاشی محرک رشدی کیتوپلاس در غلظت 10 میلی­لیتر تحت شرایط آبیاریدر فواصل آبیاری 14 روز مشاهده شد (جدول 5).

ترکیب اسانس و عصاره درمناطق مختلف اکولوژیکی یکسان نیست. مواد تشکیل دهنده اندام­های یک گیاه در زمان­های مختلف بسیارمتفاوت می­باشد و باید در زمان مناسب اندامی که دارای بیشترین میزان ماده مؤثره است را جمع آوری  کرد (راینا و همکاران 2001: هاک الما و همکاران، 2007). ازجمله عوامل مهمی که در میزان مواد مؤثره گیاهان نقش دارد و می­بایستی در هنگام جمع آوری گیاهان بویژه دارویی و معطر مورد توجه قرارگیرند، زمان برداشت مناسب است (اسمتی و همکاران 2013).

      اثر تنش خشکی بر متابولیت­های ثانویه در برخی از گیاهان دارویی، اغلب موجب افزایش بعضی از ترکیب­ها  و یا ثابت ماندن آن­ها می­شود (صالحی ارجمند 2005). تاثیرات نامناسب تنش خشکی در کاهش عملکرد اسانس در گیاه ریحان (صالحی ارجمند 2005)، آویشن (لیتچامو و همکاران 1994) و اکلیل کوهی ( سولیناس و دیانا، 1996) گزارش شده است. مقایسه نوع و ترکیب درصد مواد موجود در اسانس درگیاهان نعناع فلفلی تیمار شده با محرک رشد طبیعی کیتوپلاس تحت تنش خشکی نشان دهنده تفاوت­های در نوع ترکیبات موجود در این گونه گیاهی است. به­طور کلی ترکیباتب نظیر منتول، منتون، ژرماکونD، و ترپنوئیدهایی نظیر پینن در اغلب خانواده نعناعیان گزارش شده است که تحت تاثیر شرایط محیطی

 

 

 

 

 

و نوع تغذیه از نظر درصد این مواد در اسانس گیاه نعناع فلفلی تفاوت­های فراوانی وجود دارد. با توجه به اینکه مهم­ترین پارامتر در کاشت نعناع فلفلی میزان ماده اروماتیک منتول در اسانس آن بوده و در واقع ارزش اقتصادی و دارویی ان وابسته به میزان منتول موجود در آن است، بنابراین هدف اصلی از کاشت و داشت این گیاه استخراج میزان منتول در آن می باشد (اسمتی و همکاران 2013).

 

نتیجه گیری کلی

باتوجه به نتایج حاصل ازاین تحقیق می­توان دریافت مصرف محرک رشدی کیتوپلاس تأثیربیشتری برعملکرد کمی و کیفی نعناع فلفلی بویژه درشرایط تنش خشکی داشته و تا حدی اثرات منفی تنش خشکی را نیز در شهرستان پارس­آباد مغان جبران می­کند. به­طور کلی می­توان گفت افزایش عملکرد و درصد اسانس در گیاه نعناع فلفلی با دست­ورزی تکنیک­های زراعی امکانپذیرمی­باشد. کود زیستی کیتوپلاس همراه با کاهش تنش آبیاری در فواصل آبیاری 14 روزموجب افزایش درصد اسانس محتوای کلروفیل، عرض ساقه، طول میانگره نسبت به گیاهان شاهد و فاقد تیمار شد. کیتوپلاس با غلظت ml.l-1 5 توانست تنش خشکی را بهتر تعدیل نماید وموجب بهبود رشد، عملکرد و درصد اسانس در گیاه نعناع فلفلی شود. در انتها در بررسی ترکیبات اسانس میزان منتول و استرهای منتول در گیاهان تیمارشده و قرار گرفته تحت تنش آبیاری؛ بیشترین میزان منتول در گیاهان تحت تاثیر اترمتقابل محرک رشدی کیتوپلاس و تنش کم ابیاری شد. بنابراین، به نظرمی­رسد که در راستای نیل به اهداف کشاورزی پایدار استفاده از محرک رشدی کیتوپلاس در غلظت­های مختلف به جای کودهای شیمیایی قابل توصیه باشد.

References

Abd El-Hadi NIM, Abo El-Ala H K and Abd El-Azim WM, 2009. Response of Some Mentha Species To Plant Growth Promoting Bacteria (PGPB) Isolated From Soil Rhizosphere. Australian Journal of Basic and Applied Science 3 (4): 4437 - 48.
Asgharipour MR andRafiei M, 2011. The Effect Of different Concentrations of humic Acidonseed Germination Behavior and Vigor of barley. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 5(12): 610-613.
Azzaz NA, Hassan EA andHamad EH, 2009. The Chemical Constituent and Vegetative and Yielding Characteristics of Fennel Plants Treated with Organic and Bio-fertilizer Instead of Mineral Fertilizer. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 3 (2): 579 - 87.
Babel S, Kurniawan TA, 2003. Low-cost adsorbents for heavy metals uptake from contaminated water: a review. Journal of Hazardous Materials, 97: 219-243.
Bahreininejad B, Razmjoo J, andMirza M, 2013.  Influence of water stress on morphophysiological and phytochemical traits in Thymus daenensis. International. Journal Plant Prodoction, 7: 155-66.
Banon SJ, Ochoa J, Franco JA, Alarcon JJ andSanchez-Blanco MJ, 2006.  Hardening of coleander seedlings by deficit irrigation and low air humidity. Environmental and Experimental Botany. 56: 36-43.
Bettaieb I, Zakhama N, Aidi Wannes W, Kchouk  ME andMarzouk B, 2009. Water deficit effects on Salvia officinalis fatty acids and essential oils composition. Scientia horticulturae, 120: 271-75.
Cavatte PC, Rodiguez-L Opez NF, Martins SC, Mattos MS, Sanglard LM andDaMatta FM, 2012. Functional analysis of the relative growth rate, chemical composition, construction and maintenance costs and the payback time of Coffea Arabica L. leaves in response to light and water availability. Journal of Experimental Botany, 63: 3071-82.
Cheng X, Zhou U, Cui X, 2006. Improvement of phenylethanoid glycosides biosynthesis in Cistanchede serticolacell suspension cultures by chitosan elicitor. Biotechnology, 121: 253- 260.
Dai J, Orsat V, Raghavan GSV andYaylayan V, 2010. Investigation of various factors for the extraction of peppermint (Mentha piperita L.)  Leaves. Journal of Food Engineering, 96: 540 – 3.
Dunford NT, Vazquez RS, 2005. Effect of water stress on plant growth and thymol and carvacol concentrations in Mexican oregano grown under controlled conditions. Journal of Applied Horticulture, 7(1): 20-22.
Ekren S, Sonmez C, Ozcakal E, Kukul Kurttas Y, Bayram E andGurgulu H, 2012. The effect of different irrigation water levels on yield and quality characteristics of purple basil (Ocimum basilicum L.). Agricultural water management, 109: 155-61.
El-Tanahy AMM, Mahmoud AR, Abde-Mouty MM and Ali AH, 2012. Effect of chitosan doses and nitrogen sources on the growth, yield and seed quality of cowpea.Aus. Journal of Basic and Applied Sciences, 6 (4): 115-121.
Farouk S andRamadan A, 2012. Improving growth and yield of cowpea by foliar application of chitosan under water stress. Egyptian Journal of Biology,14: 14- 26.
Foster S, 1996. Peppermint: Mentha piperita. American Botanical Council- Botantical Series, 306: 3-8.
Garcia AC, Santos LA, Izquierdo FG, Rumjanek VM, Castro dos Santos  F S, de Souza LGA, Germ M, Kreft I, Stibilj V andUrbanc-Berčič O, 2014. Combined effects of selenium and drought on photosynthesis and mitochondrial respiration in potato. Plant Physiology and Biochemistry, 45: 162–167.
Ghasemi Siani E, Fallah S and Tadayyon A, 2011. Study on yield and seed quality of Plantago ovata Forssk under different nitrogen treatments and deficit irrigation.  Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 27(3), 517-528.
Gornik K, Grzesik M andDuda BR, 2008. The effect of chitosan on rooting of gravevine cuttings and on subsequent plant growth under drought and temperature stress. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 16: 333-43.
Hakk Alma M, Ertaş M, Nitz S. and Kollmannsberger H, 2007. Chemical composition and content of essential oil from the bud of cultivated Turkish clove (Syzygiumaromaticum L.). Bioresources, 2(2): 265-269.
Herms DA and MattsonWJ, 1992. The dilemma of plants: To grow or defend. The Quarterly Review of Biology, 67:283 – 325.
Hong-Bo Sh, Li-Ye Ch, Cheruth AJ andChang-Xing Z, 2008. Water-deficit stress-induced anatomical changes in higher plants. Current Research in Biologies, 331: 215–225.
Jangow G, Hoeflich G andHoffman KH, 1991. Inoculation of non-symbiotic rhizosphere bacteria: Possiblities of increasing and stabilizing yield. Angewandte Botanik, 65:97-126.
Khan WM, Prithiviraj B andSmiyh DL, 2002.  Effect of foliar application of chitin oligosaccharides photosynthesis of maize and soybean. Photosynthetica, 40:  621-24.
Koochaki A, Tabrizi L andGhorbani R, 2008. Effect of biofertilizers on agronomic and quality criteria of Hyssop (Hyssopus officinalis L.). Iranian Journal of Field Crops Research, 1 (6): 588 - 91.
Kumar A, Samarth RM andYasmeen S, 2004. Anticancer and radioprotective potentials of Mentha piperita L.  Journal of Bio Factors, 22 (1-4): 87- 91.
Lawlor, DWCornic G, 2002. Photosynthetic carbon assimilation and associated metabolism in relation to water deficits in higher plants. Plant Cell Environment, 25: 275-94.
Letchamo W, Marquard R, Holz J. and Gosselin A, 1994. Effects of water supply and light intensity on growth and essential oil of two Thymus vulgaris selections. Angewandte Botanic, 68: 83-88.
Mahmoudian M, Ismail Zadeh M and Nasri M, 2011. Corresponding to crown cover, leaf chlorophyll, stomatal conductance and performance of dwarf garnet ducts. Journal of Ecophysiology of Crops,3 (2): 144-1
Mandal S, 2010. Induction of phenolics, lignin and key defense enzymes in eggplant (Solanum melongena L.) roots in response to elicitors.  Biotechnology, 9:8038-8047.
Martin EC, Slack DC, Tannksley KA and Basso B, 2006. Of Fresh and composted dairy manure applications on alfalfa yield and the environment in Arizona. Agronomy Journal, 98: 80-84.
Najafvand SN, Alemzadeh A andAnsari F, 2008. Effect of different level of nitrogen fertilizer with two types of bio-fertilizer on growth and yield of two cultivars of tomato (Lycopersicon esculentum Mill). Journal of Plant Science,7(8):757-761.
Norozphour G, Rezvani-Mogadam P, 2006.  Effect of irrigation intervals and plant density on yield and essential oil of black seed beads (Nigella sativa L.).  Journal of Agronomy and Horticulture, 73, 133-138.
Omidbaigi, R and Mahmoudi Sorestani M, 2010. Effect of drought stress on some morphological traits, amount and yield of essential oil of Agastache foeniculum [pursh] kuntze. Journal of Horticultural Science of Iran, 4 (2): 153-161.
Raina VK, SrivastavaS K, Aggarwal KK, Syamasundar KV and Kumar S, 2001.  Essential oil composition of Syzygiumaromaticum leaf from Little Andaman, India. Flavour and Fragrance Journal, 16(5): 396-384.
Rebey BI, Jabri-Karoui I, Hamrouni-Sellami I, Bourgou S, Limam F and Marzouk B, 2012. Effect of drought on the biochemical composition and antioxidant activities of cumin (Cuminum cyminum L.) seeds. Industrial Crops and Products, 36: 238–245.
Rezaei Chiyaneh E, Zehtab Salmasi S, Ghassemi Golezani K and delazar A, 2012.  Effect of irrigation treatments on yield and(Foenicolum vulgare L.) landraces. Journal of Sustainable Agriculture and Production Science, 22(4): 58-70.
Rezaei Rad H, Hoshmad AR, Nasseri AA and Siyahpoush MR, 2013. Effect of drought stress on physiological characteristics and corn yield in presence of shallow depths in climatic conditions of Ahwaz. Irrigation 39,(1):  55-66.
Salehi Arjmand H, 2005. The effect of environmental stresses on the increase of secondary metabolites in plants, Proceedings of the National Conference on Sustainable Development of Medicinal Plants, Forests and Rangeland Research Institute Publications, pp. 305-307.
Salekjalali M, Haddad R and Jafari B, 2012. Effect of water shortages on the activity of antioxidant enzymes and contents of chlorophyll and proteins in barley. Am-Euras. Journal of Agriculture and Environmental Sciences, 12 (1): 57-63.
Shao HB, Chu LY, Jaleel CA andZhao CX, 2008. Water-deficit stress-induced anatomical changes in higher plants. Comptes Rendus Biologies, 331: 215-25.
Sharma AK, 2002. Biofertilizers for Sustainable Agriculture. Agrobios, India, 407 p.
Singh R, Shushni AM and Belkheir A, 2011.  Antibacterial and antioxidant activities of Mentha piperita L. Arabian Journal of Chemistry, 1: 1 - 5.
Smeti S, Atti N, Mahouachi M and Munoz F, 2013. Use of dietary rosemary essential oils to increase the shelf life of barbarine light lamp meat. Small Ruminant Research 113, 340-345.
Solinas V and Deiana S, 1996. Effect of water and nutritional conditions on the Rosmarinus officinalis L. phenolic fraction and essential oil yields. Italian Epos, 19: 189-198.
Verma RS, Rahman L, Verma RK, Chauhan A, Yadav A K and Singh A, 2010. Essential oil composition of Menthol mint (Mentha arvensis L.) and Peppermint (Mentha piperita L.) cultivars at different stages of plant growth from Kumaon Region of Western Himalaya. Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 1 (1): 13 - 8.
Wang Y, Ma F, Li M, Liang D and Zou J, 2011. Physiological responses of kiwifruit plants to exogenous ABA under drought conditions. Plant Growth Regulation, 64: 63-74.
Zahir AZ, Arshad M andFrankenberger WF, 2004. Plant growth promoting rhizobacteria: applications and perspectives in agriculture. Advances in Agronomy, 81: 97-168.
JOURNAL OF AGRICULTURAL SCIENCE AND SUSTAINABLE PRODUCTION
Volume 30, Issue 3
November 2020
Pages 169-184

Files

Share

How to cite

Statistics